免疫組化Immunohistochemistry
一、概述
1、定義
用標(biāo)記的特異性抗體對(duì)組織切片或細(xì)胞標(biāo)本中某些化學(xué)成分的分布和含量進(jìn)行組織和細(xì)胞原位定性、定位或定量研究，這種技術(shù)稱為免疫組織化學(xué)（immunohistochemistry）技術(shù)或免疫細(xì)胞化學(xué)（immunocytochemistry）技術(shù)。
2、原理
根據(jù)抗原抗體反應(yīng)和化學(xué)顯色原理，組織切片或細(xì)胞標(biāo)本中的抗原先和一抗結(jié)合，再利用一抗與標(biāo)記生物素、熒光素等的二抗進(jìn)行反應(yīng)，前者再用標(biāo)記辣根過氧化物酶（HRP）或堿性磷酸酶（AKP）等的抗生物素（如鏈霉親和素等）結(jié)合，最后通過呈色反應(yīng)或熒光來顯示細(xì)胞或組織中化學(xué)成分，在光學(xué)顯微鏡或熒光顯微鏡下可清晰看見細(xì)胞內(nèi)發(fā)生的抗原抗體反應(yīng)產(chǎn)物，從而能夠在細(xì)胞爬片或組織切片上原位確定某些化學(xué)成分的分布和含量。
3、分類
1）按標(biāo)記物質(zhì)的種類，如熒光染料、放射性同位素、酶（主要有辣根過氧化物酶和堿性磷酸酶）、鐵蛋白、膠體金等，可分為免疫熒光法、放射免疫法、免疫酶標(biāo)法和免疫金銀法等。
2）按染色步驟可分為直接法（又稱一步法）和間接法（二步、三步或多步法）。與直接法相比，間接法的靈敏度提高了許多。
3）按結(jié)合方式可分為抗原-抗體結(jié)合，如過氧化物酶-抗過氧化物酶（PAP）法；親和連接，如卵白素-生物素-過氧化物酶復(fù)合物（ABC）法、鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶連結(jié)（SP）法等，其中SP法是比較常用的方法；聚合物鏈接，如即用型二步法，此方法尤其適合于內(nèi)源性生物素含量高的組織抗原檢測(cè)。
4、實(shí)驗(yàn)所用標(biāo)本
實(shí)驗(yàn)所用主要為組織標(biāo)本和細(xì)胞標(biāo)本兩大類，前者包括石蠟切片（病理切片和組織芯片）和冰凍切片，后者包括組織印片、細(xì)胞爬片和細(xì)胞涂片。其中石蠟切片是制作組織標(biāo)本最常用、最基本的方法，對(duì)于組織形態(tài)保存好，且能作連續(xù)切片，有利于各種染色對(duì)照觀察；還能長(zhǎng)期存檔，供回顧性研究；石蠟切片制作過程對(duì)組織內(nèi)抗原暴露有一定的影響，但可進(jìn)行抗原修復(fù)，是免疫組化中首選的組織標(biāo)本制作方法。
5、實(shí)驗(yàn)所用抗體
免疫組化實(shí)驗(yàn)中常用的抗體為單克隆抗體和多克隆抗體。單克隆抗體是一個(gè)B淋巴細(xì)胞克隆分泌的抗體，應(yīng)用細(xì)胞融合雜交瘤技術(shù)免疫動(dòng)物制備。多克隆抗體是將純化后的抗原直接免疫動(dòng)物后，從動(dòng)物血中所獲得的免疫血清，是多個(gè)B淋巴細(xì)胞克隆所產(chǎn)生的抗體混合物。
二、免疫染色
下面以石蠟切片的免疫組化為例演示詳細(xì)操作流程（SP法）:
1.60℃烤片2小時(shí)
2.脫蠟。二甲苯脫蠟15分鐘，三次
3.水化。依次經(jīng)過無水乙醇、95%、90%、80%、70%，各5分鐘，蒸餾水（或自來水）5分鐘
4.PBS（洗液C-0079）洗5分鐘，三次
5.抗原修復(fù)。枸櫞酸緩沖液（修復(fù)液，C-0070）（約92-95℃）煮沸（沸水浴）修復(fù)15分鐘，自然涼至室溫。PBS洗5分鐘，三次
6.3%雙氧水（包含在SP-0023中）消化內(nèi)源性的過氧化物酶，20分鐘，PBS洗5分鐘，三次
7.正常山羊血清（包含在SP-0023中）封閉，37℃20分鐘
8.一抗孵育，4℃過夜. （抗體稀釋液C-0007）
9.PBS洗5分鐘，三次
10.二抗孵育，37℃20分鐘（二抗為生物素標(biāo)記的羊抗兔IgG，包含在SP-0023中），PBS洗5分鐘，三次
11.三抗孵育，37℃20分鐘（三抗為辣根酶標(biāo)記的鏈霉親和素，包含在SP-0023中），PBS洗5分鐘，三次
12.DAB（顯色劑C-0010）顯色，鏡下觀察結(jié)果，適時(shí)終止
13.蘇木素（C-0021）復(fù)染5分鐘，自來水沖洗片刻，1%的鹽酸酒精（75%）溶液（此試劑無法銷售，請(qǐng)自行配置，配制比例為：100ml 75%酒精+1ml濃鹽酸）分化30秒，自來水沖洗5分鐘藍(lán)化
14.脫水。依次經(jīng)過70%、80%、90%、95%、無水乙醇，各5分鐘，二甲苯15分鐘，三次
15.封片，中性樹膠（C-0073）封片
三、有關(guān)免疫組化實(shí)驗(yàn)的重要問題
（一）組織材料處理
1.取材要取新鮮組織，大小合適，用生理鹽水洗凈
2.固定固定就是把病理標(biāo)本組織浸泡在固定液中（常用的有4%多聚甲醛），使組織或細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)凝聚、沉淀或變性成為不溶性物質(zhì)，并保持細(xì)胞原有的形態(tài)結(jié)構(gòu)
3.洗滌固定后一定要把滲透到組織里面的固定液洗去，以利于進(jìn)行脫水，若組織中留有較多的固定液，則將影響脫水劑，甚至可在組織中發(fā)生沉淀而影響后續(xù)染色及觀察，對(duì)于陳舊性標(biāo)本或固定時(shí)間過長(zhǎng)的標(biāo)本，更應(yīng)注意流水沖洗。
4.脫水脫水必須徹底，若脫水不盡，則切片后組織與空氣接觸即干燥收縮，蠟塊切面出現(xiàn)凹陷現(xiàn)象，雖可勉強(qiáng)切片，但染色效果差，染色時(shí)也容易脫落
5.透明乙醇等脫水劑不能溶解石蠟，所以浸蠟之前需要一個(gè)既能與乙醇混合又能溶解石蠟的媒劑，以便使石蠟浸入到組織中去，當(dāng)組織中全部被透明劑占有時(shí)，光線可以透過，組織可呈現(xiàn)不同程度的透明狀態(tài)，此現(xiàn)象稱為透明。如果組織不能透明，表明脫水未盡必須重新返工，否則影響到浸蠟的進(jìn)行，但返工時(shí)往往效果不好
6.浸蠟浸蠟時(shí)間根據(jù)組織的類型可適當(dāng)調(diào)整，一般原則較小組織脫水時(shí)間和浸蠟時(shí)間較短；骨、肌肉等堅(jiān)硬組織脫水和浸蠟時(shí)間不宜過長(zhǎng)；脂肪組織、疏松結(jié)締組織脫水和浸蠟時(shí)間需增加
7.包埋包埋時(shí)應(yīng)注意組織的包埋方向，否則將影響組織切片的形態(tài)。包埋用的石蠟要和浸蠟用的石蠟熔點(diǎn)一致，包埋用的石蠟溫度要稍高于浸蠟的溫度。包埋好后可置于冷水中使石蠟迅速冷凝。包埋好的石蠟塊應(yīng)呈均勻的半透明狀，如出現(xiàn)白色渾濁則其中存在石蠟的結(jié)晶，這種蠟塊不能切除薄的切片?？赡苁墙M織脫水不充分，組織內(nèi)或石蠟中混有透明劑，或包埋時(shí)動(dòng)作太慢或石蠟?zāi)烫?，所以冷卻時(shí)水溫不能過高，否則就不宜迅速凝固
8.切片可以將制作好的蠟塊置于低溫環(huán)境預(yù)冷，切出的切片連續(xù)性較好，有利于展片，一般切片厚度4-6um
（二）抗原修復(fù)
組織在制作過程中，由于固定液的作用封閉了抗原，又由于熱的作用致使部分抗原的肽鏈發(fā)生扭曲，致使在免疫組化的染色過程中不能將其顯示出來，為了解決上述的問題，利用化學(xué)試劑和熱的作用將這些抗原重新暴露出來或修正過來的過程稱為抗原修復(fù)。
北京博奧森常用的抗原修復(fù)液有：0.01M枸櫞酸（pH6.0）、0.05M EDTA（pH8.0）、0.01M TBS（pH7.4）、胃蛋白酶、胰蛋白酶
北京博奧森常用的抗原修復(fù)方法：
方法1：沸水浴修復(fù)，將盛有修復(fù)液和玻片的燒杯置于沸水浴環(huán)境，保持外部沸騰狀態(tài)15min，自然冷卻至室溫。
方法2：微波修復(fù)，將盛有修復(fù)液和玻片的燒杯置于微波爐中，高火5min，?；?min，中火5min，自然冷卻至室溫。
方法3：高壓修復(fù)，修復(fù)液加入高壓鍋加熱至沸騰，放入玻片，封蓋加壓持續(xù)加熱至噴氣時(shí)開始計(jì)時(shí)修復(fù)2min，自然冷卻至室溫。
方法4：使用胃蛋白酶修復(fù)，將胃蛋白酶修復(fù)液加入到組織上，37℃，消化30min
抗原修復(fù)，必須注意以下問題：
1、修復(fù)液的選擇。
0.01M枸櫞酸（pH6.0）：應(yīng)用最多的抗原修復(fù)液，適用于大多數(shù)的抗原，用該液修復(fù)后的抗原表達(dá)增強(qiáng)，抗原的定性和定位很理想，結(jié)果不錯(cuò);
0.05M EDTA（pH8.0）：應(yīng)用較多的抗原修復(fù)液，修復(fù)能力較強(qiáng)，對(duì)于保存時(shí)間較長(zhǎng)的切片或目的蛋白表達(dá)較弱的組織有很好的修復(fù)效果，需要控制好修復(fù)時(shí)間，否則容易出現(xiàn)較重的背景;
0.01M TBS（pH7.4）：中性修復(fù)液，適用于大多數(shù)抗原，對(duì)于核定位蛋白有較好的修復(fù)效果;
胃蛋白酶：應(yīng)用較多的抗原修復(fù)液，適用于大多數(shù)的抗原，使用溫度37℃，對(duì)于容易脫片的切片有很好的保護(hù)作用。
胰蛋白酶：應(yīng)用較多的抗原修復(fù)液，適用于大多數(shù)的抗原
2.抗原熱修復(fù)時(shí)應(yīng)選擇最佳溫度。
據(jù)實(shí)驗(yàn)認(rèn)為溫度在92℃－98℃是合適的，尤其在95℃為最好，這是因?yàn)椋海?）這種溫度未達(dá)沸騰，切片不容易脫離載玻片；（2）能夠解離和破壞與蛋白交聯(lián)的甲醛醛鍵等，處理時(shí)可以隨意選擇和確定抗原修復(fù)的作用時(shí)間。如果選擇高壓修復(fù)，因?yàn)闇囟容^高，時(shí)間不宜過長(zhǎng)
3.抗原修復(fù)時(shí)有效溫度所需持續(xù)時(shí)間根據(jù)各單位的設(shè)備條件以及使用的儀器不同，抗原修復(fù)時(shí)在有效的溫度范圍內(nèi)所持續(xù)的時(shí)間也不一樣。
4.抗原修復(fù)液必須遵循自然降溫規(guī)律，否則效果不好或達(dá)不到抗原修復(fù)的目的。
5.盡量使用足量的抗原修復(fù)液，防止切片干涸。
6.切片必須附貼牢固，否則發(fā)生掉片。
（三）合適的抗體稀釋度
抗體的濃度是免疫染色的關(guān)鍵，如果抗體濃度過高，抗體分子過多于抗原決定簇，可導(dǎo)致抗體結(jié)合減少，產(chǎn)生陰性結(jié)果。此陰性結(jié)果并不一定是缺少抗原，而是由于抗體過量，這種現(xiàn)象類似于凝集反應(yīng)中的前帶效應(yīng)（prozone effect）。因此，必須使用一系列稀釋做“棋盤式效價(jià)滴定”，檢測(cè)抗體的合適稀釋度，以得到最大強(qiáng)度的特異性染色和最弱的背景染色?？贵w稀釋度應(yīng)根據(jù)：1.抗體效價(jià)高，溶液中特異性抗體濃度越高，工作稀釋度越高；2.一般講，應(yīng)用的抗體稀釋度越大，溫育時(shí)間越長(zhǎng)；3.對(duì)于抗體與非特異性蛋白的結(jié)合，只有高稀釋度時(shí)才能防止其非特異性背景染色；4.稀釋用緩沖液的種類，標(biāo)本的固定和處理過程等也可影響稀釋度，所以合適的稀釋度應(yīng)根據(jù)具體情況測(cè)定?？贵w的稀釋主要是指第一抗體，因?yàn)榈谝豢贵w中特異性抗體合適的濃度是關(guān)鍵，應(yīng)用高稀釋度第一抗體僅高親和力的特異性染色反應(yīng)，減少或消除其中交叉抗體反應(yīng)。
（四）血清封閉，減少非特異性結(jié)合
組織中非抗原抗體反應(yīng)出現(xiàn)的陽性染色稱為非特異性背景染色，最常見的原因是蛋白吸附于高電荷的膠原和結(jié)締組織成分上。最有效方法是在用第一抗體前加與制備第二抗體相同動(dòng)物的非免疫血清（1:5-1:20），封閉組織上帶電荷基團(tuán)而除去與一抗非特異性結(jié)合。必要時(shí)加入2%-5%牛血清白蛋白，可進(jìn)一步減少非特異性染色，作用時(shí)間為10-20min。免疫熒光染色時(shí)，可用0.01%伊文藍(lán)（PBS溶液）稀釋熒光抗體，對(duì)消除背景的非特異性熒光染色有很好的效果。洗滌用的緩沖液中加入0.85%-1%NaCl成為高鹽溶液，充分洗滌切片，能有效的減少非特異性結(jié)合而減少背景染色。
（五）設(shè)置對(duì)照
其目的在于證明和肯定陽性結(jié)果的特異性，排除非特異性疑問。主要是針對(duì)第一抗體對(duì)照，常用的對(duì)照方法包括：1. 陽性對(duì)照；2. 陰性對(duì)照；3. 阻斷實(shí)驗(yàn)； 4.替代對(duì)照；5. 空白對(duì)照；6. 自身對(duì)照；7. 吸收實(shí)驗(yàn).
1. 陽性對(duì)照用已知抗原陽性的切片作對(duì)照與待檢標(biāo)本同時(shí)進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色，對(duì)照切片應(yīng)呈陽性結(jié)果，成為陽性對(duì)照。證明全過程均符合要求，尤其當(dāng)待檢標(biāo)本呈現(xiàn)陰性結(jié)果時(shí)，陽性對(duì)照尤為重要。
2.陰性對(duì)照用確證不含已知抗原的標(biāo)本作對(duì)照，應(yīng)呈陰性結(jié)果，成為陰性對(duì)照，是陰性對(duì)照的一種。其實(shí)空白、替代、吸收和抑制都屬于陰性對(duì)照。當(dāng)待檢標(biāo)本呈陽性結(jié)果時(shí)，陰性對(duì)照就更加重要，用以排除假陽性。
（五）顯色觀察
免疫酶染色應(yīng)注意控制：
1. 呈色質(zhì)濃度和反應(yīng)時(shí)間。增加成色質(zhì)的量和（或）增加底物反應(yīng)時(shí)間，可增加反應(yīng)產(chǎn)物強(qiáng)度；著色太深可減少反應(yīng)時(shí)間。
2. 過氧化物酶顯色時(shí)，H2O2濃度較大將使顯色反應(yīng)過快而至背景加深；過量H2O2可能抑制酶的活性。
（六）免疫組化結(jié)果的判斷
對(duì)免疫組化結(jié)果的判斷應(yīng)持科學(xué)的慎重態(tài)度，要準(zhǔn)確判斷陽性和陰性，排除假陽性和假陰性結(jié)果，必須嚴(yán)格對(duì)照實(shí)驗(yàn)，對(duì)新發(fā)現(xiàn)的陽性結(jié)果，除有對(duì)照實(shí)驗(yàn)結(jié)果之外，應(yīng)進(jìn)行多次重復(fù)實(shí)驗(yàn)，可用幾種方法進(jìn)行驗(yàn)證。必須學(xué)會(huì)判斷特異性染色和非特異性染色，對(duì)初學(xué)者更為重要，否則會(huì)得出不科學(xué)的結(jié)論。特異性染色和非特異性染色的鑒別點(diǎn)主要在于特異性反應(yīng)產(chǎn)物常分布于特定的部位。如胞漿內(nèi)，也有分布在細(xì)胞核和細(xì)胞表面的，即具有結(jié)構(gòu)性。特異性染色表現(xiàn)為在同一切片上呈現(xiàn)不同程度的陽性染色結(jié)果。非特異性染色表現(xiàn)為無一定的分布規(guī)律，常呈某一部位成片的均勻著色，細(xì)胞和周圍的結(jié)締組織均無區(qū)別的著色，或結(jié)締組織呈現(xiàn)很強(qiáng)的染色。非特異性染色常出現(xiàn)在干燥切片的邊緣，有刀痕或者折疊的部位。在過大的組織塊，中心固定不良也會(huì)導(dǎo)致非特異性染色。有時(shí)可見非特異性染色和特異性染色同時(shí)存在，由于過強(qiáng)的非特異性染色背景不但影響對(duì)特異性染色結(jié)果的觀察和記錄，而且令人對(duì)其特異性結(jié)果產(chǎn)生懷疑。
免疫組化的呈色深淺可反映抗原存在的數(shù)量，可作為定性、定位和定量的依據(jù)。
1.陽性細(xì)胞染色分布有三種類型：細(xì)胞漿、細(xì)胞核、細(xì)胞膜表面。大部分抗原見于細(xì)胞漿，可見于整個(gè)胞漿或部分胞漿
2.陽性細(xì)胞分布可分為灶型和彌漫性
3.由于細(xì)胞內(nèi)含抗原量不同，所以染色強(qiáng)度不一。如果細(xì)胞之間染色強(qiáng)度相同，常提示其反應(yīng)為非特異性
4.陽性細(xì)胞染色定位于單個(gè)細(xì)胞，且與陰性細(xì)胞相互交雜分布；而非特異性染色常不限于單個(gè)細(xì)胞，而是累及一片細(xì)胞。
5.切片邊緣、刀痕或褶皺區(qū)域，壞死或擠壓的細(xì)胞區(qū)，膠原結(jié)締組織等，常表現(xiàn)為相同的陽性染色強(qiáng)度，不能用于判斷陽性。
（七）染色失敗的幾種原因
1.所染的全部切片均為陰性結(jié)果，包括陽性對(duì)照在內(nèi)，全部呈陰性反應(yīng)，原因可能是：（1）染色未按嚴(yán)格操作步驟進(jìn)行；（2）漏加一種抗體，或抗體失效；（3）緩沖液內(nèi)含疊氮化鈉，抑制了酶的活性；（4）底物中所加H2O2量少或失效；復(fù)染或脫水劑使用不當(dāng)。
2.所有切片均呈弱陽性反應(yīng)：（1）切片在染色過程中抗體過濃，或干燥了；（2）緩沖液配制中未加氯化鈉或pH不準(zhǔn)確，洗滌不徹底；（3）使用已變色的呈色底物溶液，或呈色反應(yīng)時(shí)間過長(zhǎng)；（4）抗體溫育的時(shí)間過長(zhǎng)；（5）H2O2濃度過高，呈色速度過快；（6）粘附劑太厚。
3.所有切片背景過深：（1）未用酶消化處理切片；（2）切片或涂片過厚；（3）漂洗不夠；（4）底物呈色反應(yīng)過久；（5）蛋白質(zhì)封閉不夠或所用血清溶血；（6）使用全血清抗體稀釋不夠。
4.陽性對(duì)照染色良好，檢測(cè)的陽性標(biāo)本呈陰性反應(yīng)，固定和處理不當(dāng)是最常見的原因。對(duì)于陽性結(jié)果的定量判斷，常規(guī)方法是根據(jù)呈色深淺和陽性細(xì)胞數(shù)量分類計(jì)數(shù)，以（-）、+、++、+++等分級(jí)和計(jì)數(shù)統(tǒng)計(jì)。
