免疫組織化學(Immunocytochemistry, IHC) 是一門利用抗原與抗體特異性結合的原理，通過化學反應使標記抗體的顯色劑顯色的技術，能夠?qū)M織細胞內(nèi)的抗原進行定位、定性及相對定量檢測，進而深入探究其功能。
IHC實驗步驟繁瑣，包括切片制作（固定，脫水，透明，包埋，切片，貼片，烤片），脫蠟，水化，阻斷，抗原修復，封閉，一抗孵育，二抗孵育，顯色，復染，封片和分析等，每一個細節(jié)都可能影響到最終的染色結果。無論是從沒做過IHC的實驗小白，還是想要對當前方法進行優(yōu)化的大牛，這篇秘籍都能讓您有所收獲。文末還附有IHC通關的秘密武器——Bioss全新上市的IHC即用型試劑盒，助您一次獲得文獻級的圖像結果。
切片制作
1.染色結果不理想，細胞核發(fā)灰模糊，對比不鮮明。
解決方法：①半小時內(nèi)完成取材，組織離體后盡快固定；
②固定液選擇視組織而定，有致密外膜用Carnoy液，活檢用Bouin液，固定液體積要超過組織體積5倍以上，量少應中途換液1～3次；
2.蠟塊出現(xiàn)組織收縮凹陷，在抗原修復時脫片。
解決方法：①梯度酒精脫水盡量徹底充分；
②二甲苯脫蠟時間不宜長，1～3 h最佳，脫蠟過度會導致組織發(fā)硬發(fā)脆；
③浸蠟應選擇低熔點的石蠟，并充分浸蠟；
3.切片太厚，脫片，影響染色結果。
解決方法：①切片厚度視組織而定，如同淋巴結、腎等組織需要比較?。ú怀^3 um），腦組織需要較厚（尤其是取新鮮標本冰凍制片時），6-8 um最佳，冰凍可切至10 um；其他一般如胃腸道、肝膽等等組織，2-4 um為宜，太厚易導致細胞重疊，影響觀察；
②切片角度和刀片新舊程度對切片效果的影響較大，切片角度視切片機型號而異，新刀片更易切出完好的切片；
③撈片要求一步到位，輕夾輕放，達到無皺折、無氣泡，水溫控制在40℃左右；
④粘片時玻片可用多聚賴氨酸或蛋白甘油處理，或選擇防脫片，以增強粘附性；
4.染色不均勻。
解決方法：①切片厚度不一致，需更換刀片，調(diào)整切片機狀態(tài)；
②試劑配制未混勻，導致局部濃度不一致，應將試劑充分混勻后滴加；
③在滴加試劑時讓試劑完全覆蓋組織；
5.切片邊緣著色（邊緣效應）。
解決方法：①組織邊緣與玻片粘貼不牢，邊緣組織松脫漂浮在液體中，每次清洗不易將組織下面試劑洗盡。玻片清洗干凈后應用APES或多聚賴氨酸處理，并確保組織切片盡量薄，盡量避免選用壞死較多的組織；
6.目標蛋白定位異常。
解決方法：①使用新鮮組織切片，
②固定不充分導致組織自溶，損壞，適當延長固定時間；
③根據(jù)組織大小，提高固定劑與組織的比例，切取小組織塊，浸泡固定更加充分；
④固定劑使用不當，根據(jù)目標蛋白和樣品組織性質(zhì)選擇不同固定劑；
⑤優(yōu)化固定條件，包括濃度、溫度、固定時間等；
7.染色結果呈弱陽性。
8.陽性檢測率及著色強度相對減弱，甚至無染色。
解決方法：①固定液封閉了抗體識別表位，應縮短固定時間，增加抗原修復；
②靶蛋白含量低，建議增加抗體使用量或利用放大步驟來放大信號；
③靶蛋白為膜蛋白而表位可能因為滲透作用被破壞或移除，建議將緩沖液中的滲透試劑減少或移除。
④組織較厚，建議做細胞破膜，以便抗體順利進入胞內(nèi)與相應抗原結合。
③固定時間在4～24 h之間，長時間固定會影響抗原決定簇的暴露，且容易出現(xiàn)自發(fā)熒光及非特異性染色。
④抗原修復時，高壓時間過長，應適當縮短時間。
⑤烘干溫度為50℃，時間為12～24 h。
④脫蠟不完全，可更換脫蠟劑或延長脫蠟時間。
②切片上滴加的試劑未覆蓋均勻或未覆蓋到全部組織，邊緣的試劑少，容易變干，導致邊緣的試劑濃度比中心區(qū)域的高，而使得染色結果偏深。滴加試劑時要均勻且充分覆蓋到全部組織，為防止邊緣水分減少，滴加試劑時可以適當超出組織邊緣2 mm左右，保證組織部分覆蓋均勻。用組化筆畫圈時，距組織邊緣3-4 mm為宜，避免油劑對實驗結果的影響。
⑥抗原擴散，嘗試使用交聯(lián)固定劑而不是有機（醇類）固定劑。
解決方法：①不當?shù)墓潭ǚ绞交蚬潭〞r溫度過高，影響待測抗原的數(shù)量和質(zhì)量，應根據(jù)組織選擇更適宜的固定方式及溫度。
抗原修復
1. 陽性檢測率及著色強度相對減弱，甚至無染色。
解決方法：①抗原修復緩沖液有多種，常用的有檸檬酸鹽緩沖液（pH 6.0），EDTA緩沖液（pH 8.0-9.0），Tris / Tris-EDTA緩沖液（pH 9.0-10.0），和胰酶（pH 3.5±0.2），修復液的PH值對染色結果的影響比較大，具體選擇應視情況而定；
②抗原修復不足，由于固定步驟引起的蛋白交聯(lián)導致抗原仍未被修復會導致染色減弱，需使用正確的抗原修復方法，如微波熱修復及高壓熱修復等；
③迅速冷卻，加熱結束后迅速用冷水澆淋使修復液急速降溫，可能造成抗原暴露不充分，且降溫太快，組織和載玻片的收縮系數(shù)不同易使組織脫片，應采用平緩冷卻，即讓修復液溫度平緩下降的方式。
2.背景染色較深。
解決方法：①固定過度，需摸索修復條件，改變抗原修復方法或減小抗原修復強度；
②抗原修復過程中，切片干涸。修復液溢出后未及時補充液體、染色切片太多、動作太慢、忘記滴液、滴液流失等都是造成組織變干的原因。解決的辦法是操作要認真仔細，采用DAKO筆或PAP Pen在組織周圍畫圈，可以有效的避免液體流失，提高操作速度；
3.結果出現(xiàn)弱陽。
4.目標蛋白定位異常。
解決方法：①抗原修復過強，導致組織結構被破壞，蛋白轉移。應優(yōu)化抗原修復程序或嘗試不同的抗原修復方法，注意保留組織完整形態(tài)。
③避免切片在緩沖液或修復液中浸泡時間過長（大于 24 h）。
解決方法：①不適當?shù)目乖迯头绞?，導致抗原決定簇暴露不足，需摸索修復條件，改變抗原修復方法。
新品上市
熱銷產(chǎn)品
受篇幅限制，本次IHC實驗過程中的常見問題解析就先分享到這里。如果您還想更深入的學習IHC相關問題，可以繼續(xù)關注本系列后續(xù)文章。如果您在使用我們的產(chǎn)品時出現(xiàn)任何問題，請隨時聯(lián)系我們，Bioss資深IHC實驗專家將為您全面講解，深度分析，幫助您輕松解決IHC的“疑難雜癥”！
